Стерилизация виды режимы контроль стерилизации и стерильности

Контроль стерилизации

Основные противоэпидемические мероприятия

для предотвращения возникновения ВБИ

Стерилизация – удаление или уничтожение всех живых микроорганизмов (вегетативных и споровых форм) внутри или на поверхности предметов. Стерилизация проводится различными методами: физическими, механическими и химическими.

Методы стерилизации

Физические методы. При стерилизации физическими методами используют действие высоких температур, давления, ультрафиолетового облучения и др.

Самым распространенным методом стерилизации является воздействие высокой температуры. При температуре, приближающейся к 1000С, происходит гибель большинства патогенных бактерий и вирусов. Споры почвенных бактерий-термофилов погибают при кипячении в течение 8,5 часов. Наиболее простой, но надежный вид стерилизации – прокаливание. Его применяют при поверхностной стерилизации негорючих и теплоустойчивых предметов непосредственно перед их использованием.

Другим простым и легко доступным методом стерилизации считается кипячение. Этот процесс проводят в стерилизаторе – металлической коробке прямоугольной формы с двумя ручками и плотно закрывающейся крышкой. Внутри расположена вынимающаяся металлическая сетка с ручками по бокам, на которую кладут стерилизуемый инструмент. Основной недостаток метода заключается в том, что он не уничтожает споры, а только вегетативные формы.

При паровой стерилизации необходимо выполнение определенных условий, которые гарантируют ее эффективность и сохранение стерильности изделий в течение определенного срока. Прежде всего, стерилизация инструментов, операционного белья, перевязочного материала должна проводиться в упаковке. С этой целью используют: стерилизационные коробки (биксы), двойную мягкую упаковку из бязи, пергамент, влагопрочную бумагу (крафт-бумага), полиэтилен высокой плотности.

Обязательное требование к упаковке – герметичность. Сроки сохранения стерильности зависят от вида упаковки и составляют трое суток для изделий простерилизованных в коробках без фильтров, в двойной мягкой упаковке из бязи, бумаги мешочной влагопрочной.

Стерилизация сухим жаром. Процесс стерилизации сухим жаром проводят в сухожаровом шкафу (в печи Пастера и др.) – металлическом шкафу с двойными стенками. В корпусе шкафа расположены рабочая камера, в которой имеются полки для размещения предметов для обработки и нагревательные элементы, которые служат для равномерного нагрева воздуха в рабочей камере

Режимы стерилизации:

— температура 1500С – 2 часа;

— температура 1600С -1700C – 45 минут-1час;

— температура 1800C – 30 минут;

— температура 2000C – 10-15 минут.

Необходимо помнить, что при температуре 1600С бумага и вата желтеют, при более высокой температуре – сгорают (обугливаются). Началом стерилизации является тот момент, когда температура в печи достигает нужной величины. После окончания стерилизации печь выключается, прибор остывает до 500С, после чего из него вынимают простерилизованные предметы.

Стерилизация текучим паром. Этот вид стерилизации производится в аппарате Коха или в автоклаве при незавинченной крышке и открытом выпускном кране. Аппарат Коха представляет собой металлический полый цилиндр с двойным дном. Стерилизуемый материал загружают в камеру аппарата не плотно, для того, что бы обеспечить возможность наибольшего контакта его с паром. Начальный подогрев воды в приборе происходит в течение 10-15 минут. Текучим паром стерилизуют материалы, которые разлагаются или портятся при температуре выше 1000С – питательные среды с углеводами, витаминами, растворы углеводов и т. п.

Стерилизацию текучим паром проводят дробным методом – при температуре не выше 1000С по 20-30 минут в течение 3-х дней. При этом вегетативные формы бактерий погибают, а споры сохраняют жизнеспособность и прорастают в течение суток при комнатной температуре. Последующее прогревание обеспечивает гибель этих вегетативных клеток, появляющихся из спор в промежутках между этапами стерилизации.

Тиндализация – метод дробной стерилизации, при котором прогревание стерилизуемого материала проводится при температуре 56-580С в течение часа 5-6 дней подряд.

Пастеризация – однократное нагревание материала до 50-650С (в течение 15-30 минут), 70-800С (в течение 5-10 минут). Используется для уничтожения бесспоровых форм микробов в пищевых продуктах (молоко, соки, вино, пиво).

Стерилизация паром под давлением. Стерилизация проводится в автоклаве под давлением обычно (посуда, физиологический раствор, дистиллированная вода, питательные среды, не содержащие белков и углеводов, различные приборы, изделия из резины) в течение 20-30 минут при температуре 120-1210С (1 атм.), хотя могут быть использованы и другие соотношения между временем и температурой в зависимости от стерилизуемого объекта.

Любые растворы, содержащие белки и углеводы, стерилизуют в автоклаве при 0,5 атм. (1150С) в течение 20-30 минут

Любой инфицированный микроорганизмами (заразный) материал стерилизуют при давлении в 1,5 атм. (1270С) – 1 час, или при давлении 2,0 атм. (1320С) – 30 минут.

Стерилизация облучением. Излучение может быть неионизирующим (ультрафиолетовое, инфракрасное, ультразвуковое, радиочастотное) и ионизирующим – корпускулярным (электроны) или электромагнитным (рентгеновские лучи или гамма-лучи).

Ультрафиолетовое облучение (254 нм) обладает малой проникающей способностью, поэтому требует достаточно длительного воздействия и используется в основном для стерилизации воздуха, открытых поверхностей в помещениях.

Ионизирующее излучение, в первую очередь, гамма-облучение успешно применяется для стерилизации в промышленных условиях медицинских изделий из термолабильных материалов, поскольку позволяет быстро облучать материалы еще на стадии производства (при любой температуре и герметичной упаковке).Используется для получения стерильных одноразовых пластмассовых изделий (шприцы, системы для переливания крови, чашки Петри), и хирургических перевязочных и шовных материалов.

Механические методы. Фильтры задерживают микроорганизмы благодаря пористой структуре матрикса, но для пропускания раствора через фильтр требуется вакуум или давление, поскольку сила поверхностного натяжения при таком малом размере пор не дает жидкостям фильтроваться.

Существуют 2 основных типа фильтров – глубинные и фильтрующие. Глубинные фильтры состоят из волокнистых или гранулированных материалов (асбест, фарфор, глина), которые спрессованы, свиты или связаны в лабиринт проточных каналов, поэтому четкие параметры размера пор отсутствуют. Частицы задерживаются в них в результате адсорбции и механического захвата в матриксе фильтра, что обеспечивает достаточно большую емкость фильтров, но может приводить к задержке части раствора.

Фильтрующие фильтры имеют непрерывную структуру, и эффективность захвата ими частиц определяется в основном соответствию их размеру пор фильтра. Мембранные фильтры имеют низкую емкость, их эффективность не зависит от скорости протока и перепада давлений, а фильтрат почти или совсем не задерживается.

Мембранная фильтрация в настоящее время широко применяется для стерилизации масел, мазей и растворов, неустойчивых к нагреванию, – растворы для внутривенных инъекций, диагностические препараты, растворы витаминов и антибиотиков, среды для культур тканей и т.д.

Химические методы. Химические методы стерилизации, связанные с использованием химических веществ, обладающих явно выраженной антимикробной активностью, делятся на 2 группы: а) стерилизация газами; б) растворами (известна как дезинфекция).

Химические методы стерилизации газами применяют в лечебно-профилактических учреждениях для обеззараживания медицинских материалов и оборудования, которые нельзя стерилизовать другими способами (оптические приборы, кардиостимуляторы, аппараты искусственного кровообращения, эндоскопы, изделия из полимеров, стекла).

Бактерицидными свойствами обладают многие газы (формальдегид, окись пропилена, озон, надуксусная кислота и метилбромид), но шире всего используется окись этилена, поскольку она хорошо совместима с различными материалами (не вызывает коррозию металла, порчи обрабатываемых изделий из бумаги, резины и всех марок пластмасс). Время экспозиции при использовании газового метода стерилизации варьирует от 6 до 18 часов в зависимости от концентрации газовой смеси и объема специального аппарата (емкости) для этого вида стерилизации. Стерилизация растворами применяется при обработке больших поверхностей (пространств) или медицинских приборов, которые не могут быть обеззаражены другими методами.

Предстерилизационная обработка. Согласно требованиям отраслевого стандарта большинство изделий медицинского назначения из металла, стекла, пластмасс, резины проходят предстерилизационную обработку, состоящую из нескольких этапов:

— замачивание в моющем растворе при полном погружении изделия в дезинфицирующий раствор в течение 15 минут;

— мойка каждого изделия в разобранном виде в моющем растворе в ручном режиме в течение 1 минуты;

— ополаскивание под проточной водой хорошо промытых изделий в течение 3-10 минут;

— сушка горячим воздухом в сушильном шкафу.

Контроль качества предстерилизационной очистки изделий медицинского назначения на наличие крови проводят путем постановки амидопириновой пробы. Остаточные количества щелочных компонентов моющего средства определяют с помощью фенолфталеиновой пробы.

Согласно требованиям этого же ОСТа обязательным условием стерилизации растворами изделий медицинского назначения является полное погружение изделий в стерилизационный раствор в разобранном виде, с заполнением каналов и полостей, при температуре раствора не менее 18°С.

После стерилизации изделия быстро извлекают из раствора с помощью пинцетов или корнцангов, удаляют раствор из каналов и полостей, затем дважды последовательно промывают простерилизованные изделия стерильной водой.

Простерилизованные изделия используют сразу по назначению или помещают в стерильную емкость, выложенную стерильной простыней, и хранят не более 3-х суток. Препараты, используемые для стерилизации, классифицируют по группам: кислоты или щелочи, перекиси (6% раствор перекиси водорода), спирты (этиловый, изопропиловый), альдегиды (формальдегид, глутаровый альдегид), галогены (хлор, хлорамин, иодофоры – вескодин), четвертичные аммониевые основания, фенольные соединения (фенол, крезол), 20% Бианол, 20% Колд-Спор. Кроме того, в качестве удобных и экономичных дезинфицирующих растворов могут использоваться универсальные препараты, т.е. позволяющие проводить обеззараживание от всех форм микроорганизмов (бактерий, в том числе микобактерий туберкулеза; вирусов, включая ВИЧ; патогенных грибов), или комбинированные препараты («Дезэффект», «Аламинал», «Септодор», «Виркон»), совмещающие одновременно два процесса – дезинфекцию и предстерилизационную обработку.

Биологическая стерилизация основана на применении антибиотиков; используют ограниченно.

Контроль стерилизации осуществляется физическими, химическими и биологическими методами.

Физический метод контроля осуществляют с помощью средств измерений температуры (термометры) и давления (манометры).

Химический метод контроля предназначен для оперативного контроля одного или нескольких в совокупности режимов работы паровых и воздушных стерилизаторов. Осуществляют его с помощью химических тестов и термохимических индикаторов. Химические тесты – это запаянная с обоих концов стеклянная трубка, заполненная смесью химических соединений с органическими красителями, или только химическим соединением, изменяющим свое агрегатное состояние и цвет при достижении для него определенной температуры плавления. Упакованные химические тесты нумеруют и размещают в разных контрольных точках паровых и воздушных стерилизаторов. Термохимические индикаторы представляют собой полоски бумаги, на одной стороне которых нанесен индикаторный слой, изменяющий свой цвет на цвет эталона при соблюдении температурных параметров режима стерилизации.

Биологический метод предназначен для контроля эффективности работы стерилизаторов на основании гибели спор тест-культур. Осуществляют его с помощью биотестов. Биотест – дозированное количество тест-культуры на носителе, например, на диске из фильтровальной бумаги, или помещенное в упаковку (стеклянные флаконы для лекарственных средств или чашечки из фольги). В качестве тест-культуры для контроля работы парового стерилизатора используются споры Bacillus stearothermophilus ВКМ В-718, а воздушного стерилизатора – споры Bacillus licheniformis. После стерилизации тесты помещают на питательную среду. Отсутствие роста на питательной среде свидетельствует о гибели спор во время стерилизации.

Биологический контроль. Этот вид контроля проводят 2 раза в год. Для этого используют биотесты, предназначенные для конкретного вида паровой или суховоздушной стерилизации.

Пронумерованные пакеты с биотестами размещают в контрольных точках стерилизатора. После проведенной стерилизации в пробирки с биотестами вносят 0,5 мл цветной питательной среды, начиная со стерильной пробирки для контроля питательной среды и заканчивая контрольным тестом, не подвергавшимся стерилизации (контроль культур). Далее пробирки инкубируют. После чего проводят учет изменения цвета питательной среды. В контроле (стерильная проба) цвет среды не изменяется. В пробирке с контролем культуры цвет среды должен измениться на цвет указанный в паспорте, что свидетельствует о наличии жизнеспособных спор.

Работа считается удовлетворительной, если цвет питательной среды во всех биотестах не изменился. Результаты регистрируют в журнале.

При необходимости контроля за стерильностью медицинских изделий, подвергнутых стерилизации, лаборант бактериологической лаборатории или операционная сестра под руководством сотрудников баклаборатории осуществляет забор проб на стерильность.

Центральное стерилизационное отделение в лпу (цсо).

Задача центрального стерилизационного отделения (ЦСО) состоит в обеспечении лечебно-профилактических учреждений стерильными изделиями медицинского назначения: хирургическими инструментами, шприцами, иглами, контейнерами, хирургическими перчатками, лейкопластырями, перевязочными и шовными материалами и др.

Функции центрального стерилизационного отделения (ЦСО):

-прием, хранение различных материалов до их обработки и стерилизации;

— разборка, выбраковка, учет изделий;

— предстерилизационная очистка (мытье, сушка);

— комплектование, упаковка, укладка в стерилизационную тару;

— стерилизация изделий;

— контроль качества предстерилизационной очистки и стерилизации;

— ведение документации и строгий учет приема и выдачи изделий;

— выдача стерильных изделий больницам, поликлиникам.

Помещения любого центрального стерилизационного отделения (ЦСО) обычно подразделяются на 2 зоны: нестерильную и стерильную. Структура ЦСО предусматривает последовательное прохождение обрабатываемыми изделиями ряда этапов, начиная от приема и сортировки, стерилизации, хранения простерилизованных изделий, и выдачи их для проведения соответствующих манипуляций.

В нестерильной зоне располагаются: моечная, комната изготовления, укладки и упаковки перевязочных материалов, комната обработки перчаток, стерилизационная (загрузочная сторона стерилизатора, нестерильная половина), комната контроля, комплектации и упаковки инструментов, кладовая упаковочных материалов, кабинет персонала, санитарный узел.

В стерильной зоне располагаются: стерилизационная (разгрузочная сторона стерилизатора, если они шкафного типа), склад для стерильных инструментов, экспедиция.

Уборку производственных помещений ЦСО проводят 1 раз в день с обязательным применением дезинфицирующих средств. В ЦСО должна быть обязательно оборудована приточно-вытяжная вентиляция. Полы в этом отделении должны быть покрыты гидроизоляцией, обложены плиткой или покрыты линолеумом. Потолки покрашены масляной краской.

При планировании работы ЦСО необходимо предусматривать организацию 2-х поточной обработки:

1 поток – обработка и стерилизация инструментов, шприцов, игл, резиновых изделий;

2 поток – подготовка и стерилизация белья и перевязочного материала.

Контроль санитарно-гигиенического состояния ЦСО проводится прежде всего микробиологическими методами. При проведении контроля исследуют воздух в ЦСО, делают смывы с предметов медицинского назначения и оборудования, проверяют качество стерилизации.

Основным критерием удовлетворительного санитарного состояния ЦСО является:

— в нестерильной зоне до начала работы в 1 м3 общее микробное число (ОМЧ) должно быть не более 750, во время работы ОМЧ не должно превышать 1500;

— в стерильной зоне до начала работы в 1 м3 ОМЧ должно быть не более 500, во время работы ОМЧ не должно превышать 750.

Выбор метода низкотемпературной стерилизации для изделий медицинского назначения

«Выбор метода низкотемпературной стерилизации»

П.А. Демидов,

Городская клиническая больница №4 ДЗ города Москвы, ММУ №8

На сегодняшнем, бурно развивающимся, рынке медицинских изделий (МИ) многократного применения существует большое количество изделий, стерилизация которых высокотемпературными методами недопустима. Невозможность стерилизации этих МИ определяется конструкцией их и применяемых при их изготовлении материалов (пластик, цветные металлы, стекло в металлических обрамлениях и т.д.), их физико-химическими свойствами, различными коэффициентами теплового расширения. Эта группа МИ носит общее название — термолабильные изделия.

К этим изделиям относятся следующие МИ:

  • Лапароскопическое оборудование, инструменты для эндоскопической хирургии.

  • Импланты (суставы, протезы сосудов, костей, клапаны сердца)

  • Атроскопы, биопсийные щипцы, дерматом,

  • Дрель костная, присоединительные элементы для наркозно-дыхательной аппаратуры

  • Цистоскопы, световоды, провода, хрусталик глаза

  • Аппарат «сердце-лёгкие» и т.д. (И.И. Корнев, 2000)

Таким образом, для всей этой группы МИ требуется надёжная обработка, не повреждающая материалы из которых созданы термолабильные изделия.

Согласно требованию ОСТ 42-21-2-85 существует определённая последовательность обработки МИ многократного применения. Однако с принятием на территории РФ новых стандартов ИСО эта привычная схема претерпела некоторые изменения.

Таблица 1 «Сравнение технологии очистки и дезинфекции МИ согласно ОСТ 42-21-2-85 и ГОСТ Р ИСО 15883-1-2008».

Ручной способ (ОСТ 42-21-2-85)

Механизированный способ (ГОСТ 15883-1-2008)

Ополаскивание проточной водой

Ополаскивание проточной водой

(3 минуты)

Замачивание в моющем растворе при полном погружении изделия.

Основная мойка (0,5% щелочной раствор, 60-700С-10 -15минут)

Мойка каждого изделия в моющем растворе при помощи ерша или ватно-марлевого тампона.

(0,5 мин / изделие).

Нейтрализация (1-2 мл./литр)

60 0С- 1 мин.

Ополаскивание проточной водой.

Ополаскивание проточной водой.

Ополаскивание дистиллированной водой.

Ополаскивание дистиллированной водой.

Дезинфекция (90-930С-5-10 мин.)

Сушка горячим воздухом

Сушка горячим воздухом

Как видно из приведённой таблицы в новом документе ГОСТ Р ИСО 15883-1 очистка предшествует дезинфекции. С введением СанПиН 2.1.3.2630-10, впервые в отечественной практике в документе обязательном к применению указано на то, что дезинфекция может осуществляться в моюще-дезинфицирующих машинах (МДМ). Как правило, дезинфекция в МДМ осуществляется с применением физического фактора – горячей воды (70-93 0С-100-1 мин.), однако, раз уж мы говорим о термолабильных изделиях, при невозможности термической дезинфекции необходимо выполнить дезинфекцию химическую. Для этих целей в МДМ используются специальные химические дезинфицирующие растворы на основе надуксусной кислоты, и дезинфекция также встроена в программу работы МДМ с целью повышения эффективности процесса химической дезинфекции и снижения вредного воздействия химического фактора на работающий персонал.

Основным документом, определяющим выбор метода для обработки МИ многократного применения является инструкция по эксплуатации конкретного медицинского изделия. Согласно ИСО 17664 «Информация, предоставляемая изготовителем, для проведения повторной стерилизации медицинских изделий», ответственность за выбор и валидацию определённого способа обработки для конкретного медицинского изделия несёт изготовитель. Настоящий стандарт ИСО 17664 устанавливает требования к информации, которую должен предоставить изготовитель медицинского изделия для обеспечения безопасной стерилизации.

Организация, занимающаяся обработкой, соответственно, должна руководствоваться специальными инструкциями изготовителя медицинского изделия в части выбора оборудования и/или химических реагентов.

Требования, предъявляемые к обработке МИ, охватывают полностью или частично следующие процедуры:

— подготовку на месте;

— подготовку, очистку, дезинфекцию;

— сушку;

— проверку, обследование и испытания;

— упаковывание;

— стерилизацию;

— хранение.

Как известно при обработке МИ качественная стерилизация невозможна без качественной очистки изделий. Причём согласно СанПиН 2.1.3.2630-10 предстерилизационная очистка имеет своей целью не только процесс удаления всех видов загрязнений, но и снижение микробной контаминации изделий до уровня, не превышающего уровень биоиндикатора.

Должен быть установлен валидированный метод ручной очистки. Должен быть также установлен как минимум один валидированный метод автоматической очистки с применением оборудования для очистки/дезинфекции, за исключением случая, когда медицинское изделие не выдерживает данной обработки, о чем должно быть обязательно указано в инструкции. (ИСО 17664)

Требования к дезинфекции МИ говорят о том, что должен быть установлен валидированный неавтоматизированный метод дезинфекции. Должен быть также установлен как минимум один валидированный автоматический метод с применением оборудования для очистки/дезинфекции, за исключением случая, когда медицинское изделие не выдерживает данной обработки.

Стандарт ИСО 17664 недвусмысленно указывает на то, что все процессы, связанные с обработкой изделий, должны быть валидируемы. И это неслучайно, поскольку в Европейских странах процедура валидации обязательно проводится 1 раз в год и оборудованное для очистки/дезинфекции и стерилизации в организациях, проводящих очистку, должно быть аттестовано и пройти валидацию для обеспечения необходимой степени очистки.

После проведения очистки и дезинфекции МИ, согласно требованиям СанПиН 2.1.3.2630-10 проходят контроль качества предстерилизационной очистки с применением соответствующих реактивов.

При отсутствии на обрабатываемых изделиях остаточных количеств щелочных компонентов моющих средств и следов крови необходимо позаботится о сохранности стерильности изделий, для чего используются соответствующие виды стерилизационных упаковочных материалов соответствующих ГОСТ Р ИСО 11607-2003.

В отношении применения стерилизационных упаковочных материалов ИСО 17664 говорит о том, что если при стерилизации требуется специальный метод упаковывания или размещения, то это должно быть указано в инструкции, исходя из используемого метода стерилизации. При стерилизации МИ формальдегидом и окисью этилена может быть использована слоистая целлюлозная упаковка, однако для стерилизации плазмой паров пероксида водорода данная упаковка неприменима ввиду того, что целлюлоза впитывает пероксид водорода и снижает его концентрацию. В данном случае должна использоваться упаковка на основе специфических синтетических материалов, несорбирующих пероксид водорода.

Стерилизация МИ, как финальная фаза обработки изделий многократного применения, является валидируемым процессом уничтожения всех жизнеспособных форм микроорганизмов.

Должен быть установлен валидированный метод стерилизации. По возможности в инструкции, должна быть приведена следующая информация, включая место сборки и верхнее и нижнее значение критических параметров процесса, обеспечивающего необходимый уровень стерилизации медицинского изделия:

— средства проведения стерилизации медицинского изделия;

— наименование и концентрацию вещества, применяемого при стерилизации;

— идентификация максимального содержания загрязнения в конденсате пара при обработке влажным теплом, оксидом этилена и/или паром или формальдегидом;

— необходимая степень влажности;

— минимальное время проведения или выдержки в веществе, применяемом при стерилизации;

— описания процедуры/технологии после стерилизации;

— давление при стерилизации;

— описание порядка применения; — необходимая температура вещества, применяемого при стерилизации.

Примечание – Преимущество отдается стерилизации влажным теплом.

Как видно из требований ИСО 17664 метод стерилизации низкотемпературных методов определяется производителем изделия. Если этих методов много то все они должны быть описаны в инструкции.

Существует ряд технологий, позволяющих проводить низкотемпературную стерилизацию, однако все эти технологии имеют как свои плюсы, так и свои минусы.

Таблица 2 Достижения и недостатки используемых стерилизационных технологий. (W. Rutala, D. Weber., 2008)

Метод стерилизации

Достижения

Недостатки

Пар

Нетоксичен для пациентов, персонала, окружающей среды

Цикл легко контролировать

Быстрое уничтожение микроорганизмов

Проникает в упаковочные материалы, каналы изделий

Быстрый цикл стерилизации

Губителен для термочувствительных инструментов

Со временем повреждаются микрохирургические инструменты

Может оставлять инструменты влажными и быть причиной коррозии

Плазма паров пероксида водорода

Безопасно для окружающей среды

Нетоксичные продукты

Цикл занимает от 28 до 75 минут (зависит от типа модели), не требует аэрации

Используется для влаго и термочувствительных изделий с температурой менее 50 0С

Прост для монтажа, использования и контроля, требует только электрического подключения

Совместим с многими медицинскими изделиями

Целлюлозная бумага, бельё, жидкости не могут быть простерилизованы

Размер стерилизационной камеры от 60 до 300 литров в зависимости от модели

Некоторые эндоскопы и медицинские изделия с длинными тонкими каналами не могут быть простерилизованы (см. рекомендации производителя)

Требуется синтетическая упаковка на основе полипропилена или полиолефина или специальные контейнеры

Пероксид водорода может быть токсичным при уровне более 1ppmTWA

100% Окись этилена

Проникает в упаковочные материалы, каналы изделий

Картридж одноразовый и отрицательное давление в камере минимизируют потенциальную утечку газа и воздействие окиси этилена

Прост для использования и контроля.

Совместим с многими медицинскими изделиями

Требуется аэрация для удаления остатков окиси этилена

Стерилизационная камера от 126 до 263 литров в зависимости от модели

Окись этилена токсична, канцерогенна и легко воспламеняема

Выделение окиси этилена в окружающую среду снижается посредствам катализа на 99,9% с образованием СО2 и Н2О

Картриджи с окисью этилена следует хранить в местах защищённых от возгорания

Смесь газов окиси этилена

Проникает в упаковочные материалы и пластик

Совместим с многими медицинскими изделиями

Прост для использования и контроля

Выделение окиси этилена в окружающую среду снижается посредствам катализа на 90-99,9% с образованием СО2 и Н2О

Окись этилена токсична, канцерогенна и легко воспламеняема

Потенциально опасна для персонала и пациентов

Длинный цикл /время аэрации

Надуксусная кислота

Быстрое время цикла (30-45 мин.)

Низкая температура (50-55 0С, стерилизация погружением в жидкость)

Безопасные для окружающей среды конечные продукты

Стерилянт проходит через эндоскоп с удалением солей, белка и микроорганизмов

Стерилизация без упаковки

Невозможно проконтролировать биологическими индикаторами

Используется только для погружаемых инструментов

Несовместима с некоторыми материалами (анодированный алюминий тускнеет)

В одном цикле можно обработать малое количество инструментов

Потенциально опасно для глаз и кожи при контакте с концентрированными растворами)

Также нельзя не отметить тот факт, что надуксусная кислота не зарегистрирована в РФ как стерилянт.

Специалистами США также отмечено, что стерилизация погружением в жидкость трудноприменима ввиду того, что необходима отмывка стерильной водой и доставка к месту использования в асептических условиях. Обычно химические стерилянты не могут быть проконтролированы с использованием биологических индикаторов для подтверждения стерильности (W. Rutala, D. Weber., 2008).

Окись этилена (EO)

Окись этилена была открыта в 1859 году Ш. Вюрцем. С 20 годов ХХ века применялась как инсектицид ввиду сильных проникающих свойств. С 50 годов ХХ века используется в качестве стерилянта в виде 100% или в смеси газов для стерилизации термо и влагочувствительных изделий. В качестве сырья окись этилена также используется в парфюмерии при изготовлении искусственного розового масла.

Сильные алкилирующие свойства (замена атома водорода в алкильной группе) делают этиленоксид универсальным ядом для протоплазмы: вещество вызывает свёртывание белка, дезактивацию ферментов и других биологически важных компонентов живого микроорганизма. (S. Conviser, 2000). Контроль эффективности стерилизации осуществляется химическими индикаторами (ГОСТ Р ИСО 11140-1-2009) и биологическими индикаторами (ГОСТ Р ИСО 11138-2-2000). Необходимо проведение валидации процесса этиленоксидной стерилизации (ГОСТ Р ИСО 11135-2000).

Формальдегид (LTSF)

Впервые антимикробные свойства формальдегида описаны Lowe D., в 1886 году.

Формалин — водный 35—40%-ный раствор формальдегида, или муравьиного альдегида СН20-обладает своеобразным раздражающим запахом. Содержит примеси муравьиной кислоты и метилового спирта, добавляемого для стабилизации раствора (предохранение от полимеризации формальдегида). Взаимодействуя с белком протоплазмы клеток, фор­мальдегид вызывает его свертывание, и гибель клеток этим объясняют его противомикробное и местно-раздражающее действие на ткани организма, формалин, действует как на вегетативные формы бактерий, так и на их споры и применяется главным образом для внешней дезинфекции (обеззараживание помещений, одежды, посуды и т. д.). (Большая советская энциклопедия)

В качестве стерилянта применяются 40% растворы формальдегида. Несомненным преимуществом формальдегидной стерилизации является то, что она возможна в комбинированных стерилизаторах работающих как на паровых циклах, так и на формальдегидных циклах. Время цикла формальдегидной стерилизации значительно быстрее, чем при стерилизации окисью этилена и стоимость цикла ниже. (W. Rutala, D. Weber., 2008). Стерилизация формальдегидом происходит при температуре 60-80 0С и влажности 75-100%. Весь цикл формальдегидной стерилизации происходит при отрицательном давлении, что снижает риск воздействия формальдегида на персонал, однако при недостаточно эффективной работе систем приточно-вытяжной вентиляции возможен запах формальдегида на этапе сброса формальдегида из камеры.

Контроль эффективности стерилизации осуществляется химическими индикаторами (ГОСТ Р ИСО 11140-1-2009) и биологическими индикаторами (EN ИСО 11138-5 и ГОСТ Р ИСО 18472-2009). Необходимо проведение валидации процесса пароформальдегидной стерилизации согласно (ГОСТ Р ИСО 14180-2008).

Плазма паров перекиси водорода (Gas Plasma)

Впервые исследования по спороцидной активности плазмы паров пероксида водорода были проведены в США в 1986 году (Lin). Плазма генерируется в стерилизационной камере для чего в камере создаётся глубокий вакуум с использованием высокочастотной или микроволновой энергии и газообразным пероксидом водорода с образованием большого количества свободных радикалов с незавершёнными электронными орбиталями. Свободные радикалы контактируют с клеточными компонентами (ферментами и нуклеиновыми кислотами) микроорганизмов окисляя их и прерывают метаболизм микроорганизмов (W. Rutala, D. Weber., 2008).

Проникновение в длинные и тонкие каналы у плазмы паров пероксида водорода посредством диффузии недостаточно и для этих целей в технологии используется диффузный усилитель (бустер) представляющий собой небольшую раздавливаемую стеклянную ампулу, содержащую 50% пероксида водорода, разрушаемую перед стерилизацией. Но даже с бустером существуют ограничения по длине и диаметру обрабатываемых каналов. В 2009 году немецкими исследователями проведено исследование новой технологии Sterrad NX и было отмечено то, что увеличение процентного содержания молекул пероксида в стерилизационной камере с 60 до 85%-95% за счёт удаления излишков воды обеспечивает лучшее проникновение стерилянта в канальные изделия диаметром 0,7 мм. и длиной 500 мм. без бустера. (Marianne Borneff-Lipp, Matthias Dürr, 2009)

Однако с другой стороны увеличение содержания оксидативного стерилянта может негативным способом сказаться на различных склонных к окислению материалах.

Цикл стерилизации в стерилизаторе плазмой паров пероксида водорода может составлять от 28 до 75 минут в зависимости от типа модели при этом аэрации не требуется, что, в свою очередь, обеспечивает быстрый оборот стерилизуемого инструмента.

Так как же тогда выбрать наиболее эффективный и безопасный метод стерилизации для лечебно-профилактического учреждения? На наш взгляд в первую очередь необходимо проанализировать те методы, которые рекомендует производитель МИ применяемых в конкретном лечебном учреждении. Для этого составляется сводная таблица (см. таблицу 3). В эту таблицу заносятся все существующие в ЛПУ МИ и имеющиеся на рынке стерилизационные тезнологии.

Таблица 3 «Выбор метода низкотемпературной стерилизации (пример)».

ЭО 370С

ЭО 550С

Формальдегид

600С

Формальдегид

800С

Плазма паров пероксида водорода

1. Лапароскоп

+

+

+

+

2. Иск. сустав

+

+

+

+

3. Электрокардиостимулятор

+

+

4.Гибкий эндоскоп

+

+

+

+/-

5. Дрель костная

+

+

+

+

После заполнения таблицы появится информация, что большее количество изделий можно простерилизовать безопасно и надёжно с применением одной или двух из существующих технологий. Конечно возможно использовать все существующие технологии, однако это достаточно накладно при закупке и эксплуатации виде затрат на техническое обслуживание, детали, расходные материалы и др. К примеру ведущие специалисты нашей страны рекомендуют в качестве основного метода низкотемпературной стерилизации использовать газовый метод с использованием окиси этилена, показавший свою эффективность в течение 35-летнего практического применения в ЛПУ, вспомогательным – плазменный метод (И.И. Корнев, С.М. Савенко, 2011).

Порою при выборе метода низкотемпературной стерилизации мы сталкиваемся с изделиями многократного применения, закупленными достаточно давно, у которых в силу ряда причин, утеряны паспорта. В этом случае возникает вопрос: Как стерилизовать эти изделия? В нашем случае мы вступили в переписку с производителем изделия, которому отправили письмо следующего содержания:

Администрация Городской клинической больницы № N ДЗ города Москвы просит Вас определить возможность стерилизации изделия вашего производства (Дрель, зажим и др.) в среде газа окиси этилена (формальдегида, плазмы пероксида водорода) при температуре ХХ 0С — Х час, а также определить время аэрации в аэраторе при температуре ХХ 0С.

После получения ответа от организации-производителя вопросы по стерилизации этих медицинских изделий были сняты.

Нельзя не отметить также тот факт, что СанПиН 2.1.3.2630-10
однозначно запрещает перестерилизовывать использованные МИ однократного применения. Этот процесс невозможен также ввиду того, что производитель МИ при разработке изделия не закладывал в изделие возможность перестерилизации и в этом случае юридическая ответственность за перестерилизацию МИ однократного применения ложится на тех сотрудников ЛПУ, которые санкционировали подобное действие.

Заключение:

  1. Выбор метода низкотемпературной стерилизации неразрывно связан с требованием производителей МИ многократного применения и зависит от физико-химических свойств стерилизуемых материалов.

  2. Все, существующие на данный исторический момент низкотемпературные стерилянты в той или иной степени опасны для человека. Необходимо весьма внимательно относится к организации работ по низкотемпературной стерилизации с составлением соответствующих инструкций по безопасной эксплуатации технологического оборудования и обучением лиц, занятых на работах по низкотемпературной стерилизации.

  3. Для осуществления предстерилизационной очистки, дезинфекции и низкотемпературной стерилизации термолабильных МИ в ЛПУ необходимо использовать валидируемые методы, разрешённые производителем стерилизуемых материалов и утверждённые на территории РФ.

Литература

  1. СП 3.1.1275-03 Профилактика инфекционных заболеваний при эндоскопических манипуляциях.

  2. МУ 3.5.1937-04 «Очистка, дезинфекция и стерилизация эндоскопов и инструментов к ним»

  3. ИСО 17664″ «Информация, предоставляемая изготовителем, для проведения повторной стерилизации медицинских изделий»

  4. И.И. Корнев «Стерилизация изделий медицинского назначения в лечебно-профилактических учреждениях» АНМИ 2000г.

  5. Guideline for Disinfection and Sterilization in Healthcare Facilities, William A. Rutala, Ph.D., M.P.H., David J. Weber, M.D., M.P.H., and the Healthcare Infection Control Practices Advisory Committee, CDC, 2008

  6. ГОСТ Р ИСО 11607-2003 «Упаковка для изделий, подлежащих финишной стерилизации»

  7. И.И. Корнев, С.М. Савенко» Современные методы предстерилизационной очистки изделий медицинского назначения» ООО Миле СНГ, 2011.

  8. What’s new in H2O2 Gas Plasma Sterilization? Results of microbiological efficacy testing with the NX technology Marianne Borneff-Lipp, Matthias Dürr ASP Satellite Symposium, WFHSS Conference October 8th 2009, Crete, Greece

Журнал Главная медицинская сестра №11 за 2011 год

Тема 15. Стерилизация. Виды, методы, средства

Тема 1.15. Стерилизация. Виды, методы, средства

Изделия медицинского назначения после этапа предстерилизационной обработки подвергают стерилизации в лечебном отделении, или в ЦСО, или в автоклавной.

Стерилизация – это высшая степень обработки изделий медицинского назначения многоразового применения; обеспечивает гибель вегетативных и споровых форм микроорганизмов.

Стерилизации должны подвергаться изделия медицинского назначения, соприкасающиеся с раневой поверхностью, контактирующие с кровью или инъекционными препаратами, а также медицинские инструменты, которые в процессе эксплуатации соприкасаются со слизистой оболочкой и могут вызвать её повреждение (применяются для инвазивных процедур).

Методы и виды стерилизации:

  1. Физический метод (термический, радиационный) – паровой, воздушный, радиационный, гласперленовый.
  2. Химический метод – применение растворов стерилянтов, газовый.

Стерилянты – препараты, обладающие стерилизующими свойствами.

Выбор методы стерилизации зависит от многих факторов:

— материалов, из которых состоит изделие;

— конструктивного исполнения изделий;

— необходимости длительного сохранения стерильности;

— оперативности исполнения.

В практике лечебных учреждений наиболее широкое распространение получил физический метод, термический вид стерилизации с использованием водяного насыщенного пара и сухого горячего воздуха (паровой и воздушный метод стерилизации).

Преимущества термического метода стерилизации: надежность, удобство и оперативность работы персонала, возможность использования разных видов упаковок с целью удлинения сроков сохранения стерильности изделий, отсутствие необходимости удаления остатков химических средств с изделий при использовании стерилянтов.

Воздушный метод стерилизации
Воздушную стерилизацию осуществляют сухим горячим воздухом с помощью воздушных стерилизаторов – сухожаровых шкафов. Данным методом стерилизуют изделия медицинского назначения из металла и стекла: хирургические, гинекологические, стоматологические инструменты, детали приборов и аппаратов.

Стерилизации подвергают сухие изделия в упаковках или в открытом виде в лотках/сетках.

В ЦСО изделия обрабатывают только в упаковочных материалах, в лечебных подразделениях допустимо использование мини-сухожаровых шкафов для стерилизации без упаковки. Разъемные изделия стерилизуются в разобранном виде.

Загрузку и выгрузку из воздушных стерилизаторов проводят при температуре в камере 40-50˚С.

Стерилизация воздушным методом

Наименование объекта Режим стерилизации Химический контроль Применяемое оборудование
Температура, ˚С Время, мин.
Изделия из металла, термостойкого стекла и силиконовой термостойкой резины 180 60 Термоиндикаторы ИС-180 Воздушный стерилизатор — сухожаровый шкаф

Паровой метод стерилизации
Паровой метод стерилизации (автоклавирование) предполагает использование водяного насыщенного пара под избыточным давлением. Стерилизация осуществляется в паровых стерилизаторах – автоклавах.

Качество стерилизации определяют упаковочный материал и загрузка автоклава для свободного прохождения пара.

Изделия для стерилизации помещают в стерилизационные коробки – биксы или в специальные контейнеры.
Виды биксов:

  1. Коробка стерилизационная с фильтром – корпус имеет отверстия, расположенные на крышке и днище. Изнутри отверстия закрыты бактериальными фильтрами. Фильтры обеспечивают стерильность изделий в течение 20 суток при условии ежемесячной замены.

  1. Коробка стерилизационная без фильтра – корпус имеет боковые отверстия, через которые свободно проходит пар внутрь бикса. Эти отверстия открывают и закрывают перемещением специального металлического пояса на корпусе коробке.

Изделия перед закладкой в коробку помещают в специальный упаковочный материал.

Новые стерилизационные коробки подлежат обязательной первичной химической обработке изнутри и снаружи дезинфектантом (например, самаровка, анолит, бриллиант и др.).
Подготовка стерилизационной коробки к стерилизации
Приготовить: стерилизационную коробку, салфетку, простыню, индикаторы стерильности.
Последовательность действий:

  1. Обработать руки гигиеническим способом.
  2. Проверить детали стерилизационной коробки на герметичность: плотность закрытия крышки, срок эксплуатации фильтра.
  3. Выстелить дно и стенки коробки салфеткой или простыней.
  4. Приготовить индикаторы стерильности.
  5. Проверить маркировку стерилизационной коробки.

При подготовке бикса необходимо проверить легкость передвижения пояса и точность совпадения с отверстиями пояса, прочность фиксации металлического пояса к корпусу зажимным устройством, закрепить пояс в положении, при котором отверстия корпуса открыты.
Способы укладки стерилизационных коробок

При видовой укладке в стерилизационную коробку кладут только один вид изделий медицинского назначения (операционное белье, перевязочный материал, перчатки, зонды).

При универсальной укладке комплектуют для накрытия стерильного стола в перевязочном кабинете: халат, простыни, перевязочный материал (накрытие).

При целенаправленной укладке в стерилизационную коробку помещают белье и перевязочный материал, необходимые для определенной операции.

При любом способе коробку заполняют на 70% всего объема: рыхло, свободно, параллельно движению пара для проникновения во все складки и на все поверхности стерилизуемых изделий.

Подготовка перевязочного материала

Медицинская сестра готовит перевязочный материал чисто вымытыми руками на рабочем столе. Ватные изделия (шарики, турунды) предназначены для работы в процедурном кабинете, изделия из медицинской марли (шарики, салфетки) – для перевязочной. В лечебном отделении готовят салфетки (малые, средние, большие), шарики, турунды.
Приготовление перевязочного материала
Приготовить: марлю, ножницы.
Последовательность действий:

1.Обработать руки гигиеническим способом.

Приготовление марлевых шариков:

— нарезать марлю размером 6х7 см — для малых, 11х12 см — для средних, 17х17 см — для больших,

— получить марлевую полоску, загнув противоположные концы марли на 2 см, чтобы спрятать нити,

— обернуть марлевую полоску вокруг большого пальца или фаланги 2 и 3 пальцев левой кисти в виде кулька, внутрь завернуть свободные концы,

— сложить шарики по 50 штук в марлевый мешок.
Приготовление марлевых салфеток:

— нарезать марлю размером 20х25 см — для малых, 30х40 см — для средних, 60х40 см — для больших,

— подвернуть края больших сторон по длине, чтобы они заходили друг за друга,

— подвернуть края меньших сторон, чтобы они соприкасались друг с другом,

— свернуть салфетку пополам,

— сложить салфетки по 10 штук, завернуть в марлю.

Укладка перевязочного материала в стерилизационную коробку
Приготовить:

Стерилизационную коробку, салфетку, индикатор стерильности, перевязочный материал, бирку.

Последовательность действий:

  1. Обработать руки.
  2. Выстелить салфеткой дно и края стерильной коробки так, чтобы она свисала на 2/3 высоты емкости.
  3. Уложить послойно рыхло перевязочный материал:

— секторально,

— вертикально.

  1. Накрыть салфеткой, свисающей с бикса.
  2. Поместить салфетку для обработки рук, поместить индикатор стерильности.
  3. Закрыть крышку бикса.
  4. Привязать к ручке бирку и указать:

— дату укладки,

— отделение,

— поставить подпись.

  1. Поместить с мешок и отправить в ЦСО.

В стационарах используют два режима стерилизации:

— основной режим – для изделий из коррозионностойкого металла (инструмент), стекла (лабораторная посуда), изделий из текстильных материалов (хирургическое белье, перевязочный материал);

— щадящий режим – для изделий из резины (медицинские клеенки), латекса (хирургические перчатки) и полимерных материалов (воронки, грушевидные баллончики).

Стерилизация паровым методом – автоклавирование
(водяной насыщенный пар под давлением)

Наименование объекта Режим Химический контроль
Давление пара, атм. Температура, ˚С Время, мин.
Основной режим – изделия из металла, стекла, текстильных материалов 2,0 132 20 ИС-132

(термоиндикаторная лента)

Щадящий режим – изделия из резины, латекса, полимерных материалов 1,1 120 45 ИС-120

(термоиндикаторная лента)

Срок хранения стерильных изделий зависят от вида коробки в условиях герметичности:

— КС – 3 суток (72 часа),

— КФ – до 20 суток при условии ежемесячной смены фильтра.
Материал для упаковки медицинских изделий перед стерилизацией

Вид упаковочного материала Метод стерилизации, для которого он предназначен Способ запечатывания Срок сохранения стерильности Внешний вид
Пакеты термосвариваемые комбинированные (бумага+пленка) плоские типа ПТП Паровая, газовая (этиленоксидная), радиационная Клейкой лентой (с индикатором или без), термосваривание 20 суток – при запечатывании клейкой лентой; 1 год – при термосваривании; 3 года – при радиационной стерилизации
Полиамидные термосвариваемые рулоны типа РТП Воздушная (сухожаровая) Клейкой лентой (с индикатором или без), термосваривание 20 суток – при запечатывании клейкой лентой;

1 год – при термосваривании

Пакеты бумажные (плоские или со складкой) Паровая и воздушная Клейкой лентой (с индикатором или без) 20 суток – при запечатывании клейкой лентой
Крафт-пакеты Паровая и воздушная Самоклеющаяся и несамоклеющаяся 3 суток – несамоклеющаяся; 20 суток — самоклеющаяся
Материал нетканный термосвариваемый (полотно термосвариваемое) Паровая, воздушная, газовая (этиленоксидная) В 2 слоя с последующим термосвариванием или клейкой лентой (с индикатором или без) 4 недели – при запечатывании в 2 слоя

Стерилизационные упаковки различных размеров обеспечивают защиту простерилизованных изделий от реинфекции.

Запрещается использовать стерильное изделие из упаковки, если:

— истек срок хранения изделий, принятый для данного вида упаковки;

— отсутствует информация о дате стерилизации и конечном сроке хранения;

— нарушена целостность упаковки;

— химический индикатор не изменил свой цвет;

— упаковка находится во влажном состоянии.

Химическая стерилизация
Стерилизация растворами химических средств — стерилянтами
Изделия медицинского назначения из термолабильных материалов стерилизуют в химических растворах с целью сохранности. Часто используют стерилянты комнатной температуры, поэтому способ иногда называют «холодным». При этом необходимо доступ стерилизующего средства и промывной жидкости ко всем каналам изделия. Стерилянт – химическое вещество различного происхождения и состава, вызывающее гибель всех микроорганизмов, в том числе бактерий и грибов.

Стерилизацию проводят при условии полного погружения сухих изделий в раствор, разъемных – в разобранном виде. Каналы и полости заполняют раствором.

После стерилизации все манипуляции проводят в условиях строгой асептики. Изделия извлекают из раствора стерильными пинцетами, затем промывают стерильной дистиллированной водой и высушивают на стерильных салфетках. Изделия используют сразу по назначению или помещают на хранение в стерильный контейнер.

Стерилизация гибких эндоскопов имеет свои особенности. Эндоскопы сконструированы с применением металла, стекла и оптического стекла; изделия дорогие и требуют бережного обращения. Альтернативу физической стерилизации составляет химическая – с применением современных средств.

Стерилизация химическим растворами

Препарат Режим Вид изделий, рекомендуемых к стерилизации данным методом Условия проведения стерилизации
Температура, ˚С Концентрация рабочего раствора, % Экспозиция, мин.
Перекись водорода 18

50

6,0

6,0

360

180

Изделия из полимерных материалов (пластмассы, резины), стекла, коррозионностойких материалов Полное погружение в раствор с заполнением каналов и полостей на время экспозиционной выдержки
Глутарал,

Глутарал-Н

21 Применяют без разведения 240 Инструменты из металлов
600 Изделия из полимерных материалов (пластмассы, резины), стекла, металлов, в том числе эндоскопы и инструменты к ним
Лизоформин-3000 40-50 8 60 Изделия медицинского назначения (включая эндоскопы)
Анолит Не менее 18 0,02-0,05 15-300 Изделия из полимерных материалов (пластмассы, резины), стекла, металлов, в том числе эндоскопы и инструменты к ним

Стерилизация эндохирургического инструментария

Наименование препарата Срок использования препарата после разведения Предварительный этап Экспозиция 40-50˚С Завершающий этап
НУ-Сайдекс 0,35% 24 ч Отмыть от дезинфицирующего агента, обессолить, подсушить 10 мин. Промыть в стерильной воде двукратно в2 емкостях, выложить в стерильную емкость
Лизоформин-3000, 8% Однократно То же 60 мин. То же

Принципы обеспечения стерильности:

К стерильному предмету прикасайтесь только другим стерильным предметом, чтобы избежать реконтаминации.

Держите стерильные предметы всегда на уровне выше пояса.

Считайте предмет загрязненным, если вы не уверенны в его стерильности.

Пограничную зону вокруг стерильного поля шириной около 2,5 см считают потенциально инфицированной

Не допускайте увлажнения салфеток над стерильной поверхностью; влага- входные ворота для инфекции.

Контакт стерильного и нестерильного предметов исключает работу в стерильном пространстве.

Задания для закрепления и систематизации знаний, предварительного контроля по теме 1.15. Стерилизация. Виды, методы, средства

Письменно составьте обобщающую таблицу:

Метод стерилизации Наименование объекта стерилизации Режим стерилизации Используемое оборудование Срок хранения в зависимости от упаковки
Паровой Изделия из металла, перевязочный материал
Изделия из стекла, резины
Воздушный Изделия из металла, термостойкого стекла и силиконовой термостойкой резины

СПИСОК ИСПОЛЬЗОВАННЫХ ИСТОЧНИКОВ

  1. Кулешова Л.И. Инфекционный контроль в лечебно-профилактических учреждениях / Л.И. Кулешова, Е.В. Пустоветова, Л.А. Рубашкина.- Ростов н/Д: Феникс.-2003.-352 с.
  2. Микрюкова Г.М. Инфекционная безопасность и инфекционный контроль: Методическое пособие для работников со средним медицинским образованием / Г. М. Микрюкова. – Н., 2011
  3. Основы сестринского дела: курс лекций, сестринские технологии / Л.И. Кулешова, Е.В. Пустоветова; под ред. В.В. Морозова.- Изд. 3-е._ Ростов н/Д: Феникс, 2012. – 733 с.
  4. Материалы сети Интернет.

Сроки сохранения стерильности материала в зависимости от упаковки.

Любые студенческие работы — ДОРОГО!

100 р бонус за первый заказ

Узнать цену Поделись с друзьями

Паровой метод.

Срок сохранения стерильности изделий, простерилизованных в герметичной упаковке в пергаменте, бумаге мешочной пропитанной, бумаге мешочной влагопрочной, бумаге упаковочной высокопрочной, бумаге крепированной, стерилизационной коробке с фильтром- 20 суток, а в любой негерметичной упаковке и стерилизационной коробке без фильтра-3 суток.

Кратность использования пергамента, бумаги мешочной непропитанной, бумаги мешочной влагопрочной и бумаги крепированой — до 2-х раз , крафт- бумаги- до 3-х раз(с учетом целостности).

Воздушный метод.

Изделия, простерилизованные без упаковки, помещают на » стерильный стол» и используют в течение одной рабочей смены.

Срок сохранения изделий, простерилизованных и герметично упакованных в бумагу упаковочную высокопрочную, бумагу крепированную- 20 суток. Кратность использования бумаги мешочной влагопрочной, бумаги крепированной — до 2-х раз, бумаги упаковочной высокопрочной- до 3-х раз.

Срок сохранения стерильности изделий, простерилизованных в крафт-бумаге-3 суток, кратность использования ее — до 3-х раз.

Стерилизация растворами химических веществ.

Промытые стерильные изделия после удаления остатков жидкости из каналов и полостей используют сразу по назначению или помещают на хранение в стерильную коробку, выложенную стерильной простыней, на срок не более 3-х суток.

Газовый метод.

Изделия, простерилизованные смесью ОБ или окисью этилена, применяют после их выдержки в вентилируемом помещении в течение:

-1 суток — для изделий из стекла, металла

-5-13 суток — для изделий из полимерных металлов, имеющих кратковременный контакт (до 30 минут).

-14 суток — для всех изделий , имеющих длительный контакт(свыше 30 минут) со слизистыми оболочками, тканями, кровью.

-21 сутки — для изделий из полимерных материалов, имеющих длительный контакт(свыше 30 минут), используемых для детей.